○○酵母の研究と利用○○

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514名無しゲノムのクローンさん:03/07/27 09:33
日清系列のオリエンタル酵母は
セクハラ集団!!!!!!!

どうにかしろよ!
会社内だぜ、営業先じゃなくて。
セクハラばっかり。

同じ男として見ててなさけねぇよ。
なんとかなんねぇかな、
こんな会社に入ったのが間違いだった、、、、。
何年かするとこんな気持ちがなくなって
自分も新入社員にセクハラするようになんのか?

情けねぇな、こんな事言ってる自分。
515名無しゲノムのクローンさん:03/07/27 13:59
>>509
キャラの立ったので来てたのは誰?
516名無しゲノムのクローンさん:03/07/27 14:26
W助教授
517名無しゲノムのクローンさん:03/07/27 14:28
圧力の人
518名無しゲノムのクローンさん:03/07/27 15:10
ポン女のお姉たま
>513
酵母使ってエタノールじゃなくてグリセロール作る。
アセトアルデヒドの反応を亜硫酸ソーダで阻害して、グリセロール発酵させて、
爆薬の原料のニトログリセリンの材料にするてのは1次大戦の独逸で実用化されてた。
今じゃ遺伝子いじって株を作るのが主流らしいけど。

最近の教科書じゃ端折られちまってるが、
ちょっと前の生化学か代謝の教科書でノイベルグの反応式とか調べてみれ。
     ∧_∧  ∧_∧
ピュ.ー (  ・3・) (  ^^ ) <これからも僕たちを応援して下さいね(^^)。
  =〔~∪ ̄ ̄ ̄∪ ̄ ̄〕
  = ◎――――――◎                      山崎渉&ぼるじょあ
521名無しゲノムのクローンさん:03/08/04 22:26
来年こそ全開!
522名無しゲノムのクローンさん:03/08/04 23:25
KKフアンクラブ会員殿も期待してるようです
523名無しゲノムのクローンさん:03/08/06 16:57
今すぐ会いたいの。ひろみはあなたなしじゃもうだめみたい。。。。

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524名無しゲノムのクローンさん:03/08/06 22:34
ひろみって誰だよ
525名無しゲノムのクローンさん:03/08/13 03:08
発音がわかりませんでつ。
って、別板にカキコしたけどスルーされた。
発表の時の参加者の表情ががイヤでたまりません。
Saccharomyces cerevisiae
セレビシエイ?セルベシエ?
Brettanomyces bruxellensis
ブルセレンシス?ブルッキレンジス?
どう言えば場を乗り切れまつか?

情けねぇな、こんな事言ってる自分。
526abc:03/08/13 11:41
お気に入り集 ☆
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527abc:03/08/13 16:22
お気に入り集 ☆
http://beauty.h.fc2.com/
528山崎 渉:03/08/15 18:05
    (⌒V⌒)
   │ ^ ^ │<これからも僕を応援して下さいね(^^)。
  ⊂|    |つ
   (_)(_)                      山崎パン
529名無しゲノムのクローンさん:03/08/16 07:14
サッポロ、ビール酵母配合したうま味調味料を投入
http://www.jij.co.jp/news/bio/art-20030814183606-VJIKGXKAHL.nwc
530名無しゲノムのクローンさん:03/08/26 00:20
>>525
news2.2ch.net/test/read.cgi/newsplus/1048170942/l50
531名無しゲノムのクローンさん:03/08/26 08:45
532名無しゲノムのクローンさん:03/08/28 20:45
酵母からプラスミド精製するのって難しくないですか?
教科書どおりにやってるんですが、E-Coliにtransformationしても
いつも生えてきません。
なんかこつとかあったら教えてください。

それから酵母からタンパクを抽出する簡単な方法ありませんか?
最近WBばかりなのでビードビーターがめんどくさすぎ!
533名無しゲノムのクローンさん:03/08/28 20:48
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534名無しゲノムのクローンさん:03/08/28 22:45

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535名無しゲノムのクローンさん:03/08/28 22:50
>>532
大腸菌のtransformationを阻害するものが入ってて悪さをしてることが
多いから、mini-prep用のレジンなんかで精製した後TFすると改善する。

分子量がそれほど大きくないタンパク質(<100kd)なら、菌体を1xSDS
dyeに懸濁したらすぐboilして、上清をそのまま泳動できる。コツは
boilをheat blockじゃなくてきちんと水浴を使うことと、懸濁後すぐ
(within less than 30 sec)boilすること。膜系がSDSでやられて液胞
のプロテアーゼが活性化されるからね。
536名無しゲノムのクローンさん:03/08/28 23:51
537名無しゲノムのクローンさん:03/08/29 05:26
>>535,536
聞いてみるもんですね。ありがとうございました。

TFに関して)
やっぱり阻害物質のせいですかね。
プラスミドの濃度が低いようなきがして
プロトコルの4倍量いれたのがまずかったのかな。
アドバイスどうもありがとうございました。

タンパク抽出に関して)
論文の方法とても簡単そうですね。
早速やってみようと思ったのですが、サンプルバッファーに
SDSが入ってるからBradfordができませんよね?
タンパク量をあわせるときどうしてますか?
538名無しゲノムのクローンさん:03/08/29 10:55
菌体のODで合わせろ、ボケ
539名無しゲノムのクローンさん:03/08/29 14:57
>>537
BPB(色素)の入ってないSampling Bufferを使う
Cell exrtactを100倍程度に希釈してからタンパク定量を行う
その後BPBを加える
540プリンス:03/08/29 23:48
わたし何度も逝ったよね。全部オートクレー部
541胸元全開:03/08/29 23:54
きまたくんみてる。tRNAいめでとう.
542プリソス:03/08/30 00:01
hige>マソダム>hage(プリソス)
543big arrow:03/08/30 00:03
s2だけですが何か?
544ぷりんす:03/08/30 00:26
わたし、やなぎだよりも
うえだよね
545名無しゲノムのクローンさん:03/08/30 02:48
KKフアンでつ。応援してまつ。
546名無しゲノムのクローンさん:03/09/01 23:01
KKって何物?
547名無しゲノムのクローンさん:03/09/01 23:45
マツモトクニちゃん、はもう酵母はしないのですか?
548名無しゲノムのクローンさん:03/09/01 23:48
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549名無しゲノムのクローンさん:03/11/10 14:06
SPBのコンポーネントにGFPをつけたのですが、そのGFPのドットが酵母細胞中で動きます。
小さな円を描くように動いています(結構早い)。
さらに驚いたことに、出芽酵母では液胞が見えますが、いくつかのそのGFPのドットは液胞の中から出られないでその中をぐるぐる動いているのです。

・・・コンタミですか?
しかし、ちゃんと一つの細胞に一つだけしかありません。こんなことってあるのでしょうか?

>549
私にだけにそのコンポーネントの名前を教えてください。
誰ぞ、Autophagy欠損変異株について研究してる奴はおらへんのん?
552事情通:03/11/23 20:58
プリンスは最近落ち目らしいぞ

そのうち、ポス毒募集かけるぞ
553名無しゲノムのクローンさん:04/01/01 00:11
そんなことないぞ

2004年は
ゴッド(神)シュタインに
なる予定ですが
なにか?
554名無しゲノムのクローンさん:04/01/01 03:01
  ☆
        / ̄|   ☆
       |  |彡   ビシィ
       |  |                  / ̄ ̄ ̄ ̄ ̄ ̄
      ,―    \                |  プリンス最高!
     | ___)   |              ∠  
     | ___)   |      ∧_∧      \______
     | ___)   |\___(´Д` )_____
     ヽ__)_/ \___     _____, )__
         〃  .       /    /     / /    〃⌒i
         |          /    ./     / /    .i::::::::::i
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            (_/
555名無しゲノムのクローンさん:04/01/01 19:07
プリンスの背中に
悪魔の羽がつきますた

556名無しゲノムのクローンさん:04/01/02 10:13
ぷりんすごときの話題で盛り上がってる輩は
すべて中坊だな

恥を知れ
557プリンス:04/01/02 20:32
わたし、アラニソスキャニングで
天下統一しましたが、
なにか??
今でも、アラニソスキャニングは
主流。
558名無しゲノムのクローンさん:04/01/04 22:20
>>557
いっしー、実験しる!
559名無しゲノムのクローンさん:04/01/13 12:00
どなたかcalcofluor染色のプロトコールをご存知ではないでしょうか?
のっている本でもいいので、知っている方教えてください。
560名無しゲノムのクローンさん:04/01/13 15:02
細胞をホルマリンで固定。
1mg/mlcalcofluorを2-10倍希釈した適当なbufferで、
サンプルを室温で5分インキュベート。
bufferで2-5回洗浄。
UV励起で観察。
こんなかんじ。時間と濃度は染まり具合をみて決める。
固定して時間(数日)が経ち過ぎると細胞全体が染まってしまう。
生きたままでも染まります。
Methods in Enzymology 1991,104,52に載ってたと思う。
もっと新しいのも出てるかも。
561名無しゲノムのクローンさん:04/01/13 15:30
教えて頂き、ありがとうございます。
自分でも調べたのですが、論文によって方法が全然違うので一般的な方法が
分からず、感覚がつかめなくて困ってました。
早速やってみたいと思います。
562名無しゲノムのクローンさん:04/01/13 16:04
ほんとに適当でいいなら、プレートから菌をかきとって、
スライドガラスの上の水滴にけんだくして、
1mg/mlのcalcofluorを1マイクロ入れて、まぜて、
そのままカバーガラスのせて観察しても見れるけど。
563559
かなり適当でいいのですね。
なんかもっと難しいものだと思ってました。